酵母表達系統是真核表達系統中應用最廣泛的之一,其中巴斯德畢赤酵母(Komagataella phaffii,又名Pichia pastoris)作為甲基營養型酵母的代表,近年來發展迅速,應用廣泛。
畢赤酵母:基因表達的新紀元
畢赤酵母表達系統誕生于上世紀80 年代初期,它融合了原核表達系統與真核表達系統的諸多優點,迅速在眾多表達系統中脫穎而出。與原核表達系統相比,它不僅保留了操作簡易、易于培養、生長速度快、表達量高、成本低等特性,還具備原核生物所欠缺的對外源蛋白的翻譯后修飾能力,如糖基化、蛋白磷酸化等,使表達的重組蛋白更接近天然產物。同時,它又克服了釀酒酵母分泌效率差、表達菌株不穩定、表達質粒易丟失等缺陷,成為外源蛋白表達的理想選擇。
畢赤酵母表達系統的主要優勢
1. 高效AOX1啟動子:目前最強、調控機制最嚴謹的啟動子之一,便于調控外源基因的表達。
2. 蛋白加工修飾功能:可對表達的外源蛋白進行糖基化、磷酸化、脂類酰化等翻譯后修飾,使重組蛋白與天然產物更相似。
3. 低成本與高效生長:菌株生長迅速,培養基成本低廉,培養條件簡單。
4. 高表達量:外源蛋白表達量高,支持胞內和分泌表達。
5. 基因穩定整合:外源基因能在基因組的特定位點以單拷貝或多拷貝形式穩定整合,可穩定遺傳50代以上。
6. 高密度發酵:耐受高密度發酵,便于工業化生產。
P. pastoris生產重組蛋白的流程
畢赤酵母菌株多樣性
當前所采用的巴斯德畢赤酵母菌株都源自原始的Y-11430菌,常用的有GS115、KM71、X33和SMD1168等。蛋白胞內表達優先選MutS表型,分泌表達Mut + 和MutS均可;多數菌株如SMD1168、GS115、KM-71是組氨酸脫氫酶缺陷型,可用不含組氨酸培養基篩選重組子,且SMD1168為蛋白酶缺陷型,適合表達不穩定蛋白質或蛋白質復合物以避免內源性蛋白酶降解。但SMD1168菌株生長緩慢,導致蛋白質產量低
菌株 |
基因型 |
表型 |
應用 |
---|---|---|---|
X33 |
野生型 |
Mut+ His+ |
篩選Zeocin抗性表達載體 |
GS115 |
his4 |
Mut+ His- |
篩選含HIS4的表達載體 |
KM71 |
his4 arg4 aox1?::ARG4 |
MutS His- |
篩選含HIS4的表達載體 |
KM71H |
aox1::ARG4 arg4 |
MutS His+ |
篩選Zeocin抗生素抗性的表達載體 |
SMD1168 |
his4 pep4 |
Mut+ His+ |
在無蛋白酶A活性的酵母菌株中 篩選含HIS4的表達載體 |
SMD1168H |
pep4 |
Mut+ |
在無蛋白酶A活性的酵母菌株中篩選Zeocin抗生素表達載體 |
畢赤酵母常用表達載體
畢赤酵母表達載體分為分泌型和非分泌型兩大類,分別適用于不同類型的蛋白質生產需求,其中分泌型載體利用釀酒酵母的分泌信號序列,有效引導外源蛋白的分泌,提高了蛋白的產量和純度。因此,深入了解和優化畢赤酵母表達載體,對于提升蛋白生產效率和質量至關重要,也是當前生物技術和基因工程研究中的熱點之一。
表達載體 |
標志基因 |
菌株 |
重組蛋白 |
---|---|---|---|
pPIC9K |
His4, Kan, Amp |
GS115 |
Xylanase |
GS115 |
Porcine circovirus type 2 |
||
GS115 |
Endo‐1,3(4)‐b‐d‐glucanase |
||
GS115 |
Staphylokinase |
||
pPICZα |
Shble |
SMD1168 |
Human chitinase |
GS115 |
Human topoisomerase I |
||
GS115 |
Human interferon gamma |
||
X‐33 |
C‐reactive protein |
||
SuperMan5 |
Insulin |
||
X‐33 |
Human RNase4 |
||
pHIL‐S1 |
His4, Amp |
GS115 |
Rabies virus glycoprotein |
GS115 |
Rhizopus oryzae Lipase |
||
KM71 |
Camel lactoferricin |
||
pGAPZα |
Shble |
GS115 |
Acyl homoserine lactonase |
SMD1168 |
Variable lymphocyte receptor B |
||
X‐33 |
Human gastric lipase |
||
pJL‐SX |
FLD1, Amp |
MS105 |
Formaldehyde dehydrogenase |
pBLHIS‐SX |
His4, Amp |
JC100 |
Leukocyte protease inhibitor |
常見的用于生產分泌蛋白的畢赤酵母表達載體【1】
表達載體 |
標志基因 |
菌株 |
重組蛋白 |
---|---|---|---|
pPIC3.5K |
His4, Kan, Amp |
KM71 |
Maltooligosyltrehalose synthase |
SMD1168 |
Camellia sinensis heat shock protein |
||
GS115 |
Pleurotus ostreatus laccases |
||
GS115 |
Rhizopus oryzae Lipase |
||
GS115 |
HSA/GH fusion protein |
||
pPICZ |
Shble |
X‐33 |
Aquaporin |
KM71 |
Membrane protein |
||
KM71 |
Dengue virus envelope glycoprotein |
||
pHIL‐D2 |
His4, Amp |
GS115 |
Prostaglandin H synthase‐2 |
GS115 |
CatA1 and SODC |
||
KM71 |
Rhodococcus nitrile hydratase |
||
GS115 |
Feline serum albumin |
||
pGAPZ |
GS115 |
GTPase RabA4c |
|
GS115 |
Xylose isomerase |
||
GS115 |
β‐Galactosidase |
||
pJL‐IX |
FLD1, Amp |
MS105 |
Formaldehyde dehydrogenase |
pBLHIS‐IX |
His4, Amp |
KM71 |
L1‐L2 proteins of HPV virus type 16 |
常見的用于生產胞內蛋白的畢赤酵母表達載體【1】
畢赤酵母基因改造技術
1. 基于線性化質粒載體的同源重組
同源重組技術是一種利用生物體自身修復機制的基因工程技術。在畢赤酵母中,通過將線性化的質粒載體引入,可以高效地將外源基因整合到宿主基因組的特定位點。這一過程依賴于同源臂序列,這些序列與目標基因組區域具有高度相似性,從而促進了質粒載體與宿主DNA之間的重組。這種方法的優勢在于其操作簡便、整合效率高,可以實現外源基因的多拷貝插入,這對于提高基因表達水平和蛋白質產量至關重要。在工業生產中,這種技術常被用于優化基因表達,以滿足生物制藥和工業酶生產的需求。此外,同源重組技術還可以用于基因功能研究、疾病模型構建以及生物技術產品的開發。
2. 基于CRISPR/Cas9的基因編輯
CRISPR/Cas9系統是一種革命性的基因編輯技術,它通過利用指導RNA(gRNA)引導核酸酶Cas9精確切割目標DNA序列。這種特異性的切割觸發了細胞內的修復機制,包括非同源末端連接(NHEJ)和同源定向修復(HDR),從而實現基因的敲除、插入或替換。CRISPR/Cas9技術以其高效性和精準性在基因組編輯領域占據重要地位,特別適用于復雜代謝途徑的優化和多基因編輯。在畢赤酵母中,CRISPR/Cas9技術已被廣泛應用于基因功能研究、菌株改良以及生產性能的提升。例如,通過敲除或替換特定基因,可以增強宿主菌的蛋白質表達能力或改變其代謝特性,以適應特定的工業生產需求。
3. 基于CRISPR/Cas12的基因編輯
CRISPR/Cas12系統,也稱為Cpf1,是CRISPR家族中的另一種基因編輯工具。Cas12蛋白具有廣泛的靶向能力和單鏈DNA切割特性,使其在基因組編輯中具有獨特的優勢。與Cas9相比,Cas12對靶位點的PAM(原始間隔短回文重復序列)依賴性更寬松,這為基因編輯提供了更大的靈活性。CRISPR/Cas12系統在表觀遺傳調控和新型生物技術的開發中展現出巨大潛力,例如,它可以用于研究基因沉默、激活以及DNA甲基化等表觀遺傳修飾。此外,Cas12的單鏈切割特性使其在開發新型核酸檢測技術、基因治療策略以及合成生物學應用中具有獨特的應用前景。在畢赤酵母中,CRISPR/Cas12技術的應用還相對較新,但已有研究表明,它在基因組編輯和基因功能研究中具有巨大的潛力。
畢赤酵母創新突破
經過幾十年的廣泛應用,畢赤酵母表達系統已成功表達了數以千計的異源蛋白,其中大部分為醫藥制品。美國FDA 對該系統的認可,如 Cephelon 制劑的獲批,充分證明了其安全性和有效性。在我國,雖然目前上市的基因工程藥物大多源于大腸桿菌原核表達系統,但畢赤酵母表達系統憑借其國際上的廣泛認可,必將在未來的醫藥市場中占據重要地位。
泓迅生物
泓迅生物利用CRISPR等新技術,實現了對畢赤酵母基因組的精準編輯,包括基因敲除、插入和替換。我們成功敲除了GS115菌株的KU70基因,顯著提高了畢赤酵母的重組效率和外源基因的整合頻率,同時敲除了pep4基因,降低了外源蛋白被降解的風險。
我們深耕合成生物學領域,擁有豐富的基因合成、重組蛋白表達和基因編輯經驗。我們提供一站式解決方案,幫助解決畢赤酵母蛋白表達和基因改造的需求,最大限度縮短研發周期。
》案例展示
通過對畢赤酵母GS115的基因改造,提高了菌株對外源蛋白的表達和分泌。并利用該重組菌株成功表達了多個人源重組蛋白的高效分泌表達,培養液中雜蛋白很少,產量預計可達10g/L。
》免費樣品測試
· 可免費提供少量蛋白樣品以供測試。
· 菌株、蛋白等相關信息可聯系本司咨詢。
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未來展望
畢赤酵母表達系統以其高表達、高密度、多樣化翻譯后修飾以及無內毒素和病毒的安全性等優勢,成為重組蛋白表達的優選平臺。CRISPR/Cas9等基因組編輯技術的應用將進一步推動該系統的發展,助力重組人源蛋白在生物醫藥、美容護膚等領域的研究和應用。
重組膠原蛋白基因的選擇和設計、表達條件的優化和驗證對于獲得高產量的蛋白至關重要。泓迅生物提供從“序列優化”到“基因合成”到“重組膠原蛋白表達”一站式服務。高效的基因合成、多種表達體系協助您在實驗室低成本無限合成,提高膠原蛋白的表達量、親水性和可加工性,創造更多應用可能。
參考文獻
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